产品简介:
糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸-雪夫染色试剂盒,即PAS染色试剂盒,是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒,适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色,因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色,所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸-雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。
McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色液不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质,以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基,又不至于过氧化,这是很关键的步骤。
本糖原PAS染色液采用特有配方技术,大大增强了染色效果;性能稳定,特异性强;操作简捷,仅需1h左右。
产品组分:
产品编号 | 产品名称 | BL1120A | BL1120B | BL1120C | 储存条件 |
1 | 过碘酸溶液 | 50ml | 100ml | 500ml | 4℃ 避光 |
2 | Schiff Reagent | 50ml | 100ml | 500ml | 4℃ 避光 |
3 | 苏木素染色液 | 50ml | 100ml | 500ml | RT |
4 | 酸性乙醇分化液 | 50ml | 100ml | 500ml | RT |
使用说明(仅供参考):
1. 常规固定,常采用10%福尔马林固定液(BL401A),常规脱水包埋。
2. 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液(BL170A)脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。
3. 自来水冲洗2~3min,再用蒸馏水浸洗2次。
4. 入过碘酸溶液室温放置5~8min,一般不宜超过10min。
5. 自来水冲洗1次,再用蒸馏水浸洗2次。
6. 入Schiff Reagent置于室温阴暗处浸染10~20min,自来水冲洗10min。
7. 入苏木素染色液,染细胞核1~2min,酸性乙醇分化液分化2~5s。
8. 自来水冲洗10~15min,更换蒸馏水清洗,使其返蓝。
9. 逐级常规乙醇脱水,二甲苯或脱蜡透明液透明,中性树胶(BL704A)封固。
阴性对照(可选):
1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml,处理30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本,对照片不经过碘酸溶液这一步,直接入Schiff Reagent,结果应为阴性。
染色结果:
PAS反应阳性物质(糖原或多糖):红色或紫红色
细胞核:蓝色
细胞质:深浅不一的红色
备注:颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。
注意事项:
1. 切片脱蜡应尽量干净,否则影响染色效果。
2. 过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以18~22℃最佳。
3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存,使用时避免接触过多阳光和空气,使用前,最好提前30min取出恢复到在室温,避光暗处使用。
4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5. 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
6. 该染色液常用于常规组织切片染色,对于真菌、细胞、极其薄的切片,建议采购糖原PAS染色液(细胞专用) (BL1121), 糖原PAS染色液(真菌专用) (BL1122), 因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低,不宜过染。
7. 冷冻切片染色时间尽量要短。
8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
9. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
保存条件:
一年有效。
货号 | BL1120B |
规格 | 4×100ml |
品牌 | Biosharp |
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