产品简介：

糖原PAS染色液试剂盒(Glycogen Periodic Acid-Schiff Staining Kit)也称过碘酸-雪夫染色试剂盒，即PAS染色试剂盒，是一种使用过碘酸、雪夫(Schiff)试剂对组织中糖原、粘多糖及真菌等进行染色的试剂盒，适用于不同组织的石蜡切片或冰冻切片、培养的细胞、血涂片、骨髓涂片等样品。PAS染色，因其主要用于多糖(polysaccharides)如糖原(glycogen)和粘性物质(mucosubstances)如黏多糖(glycosaminoglycan)、黏蛋白(mucins)、糖蛋白(glycoproteins)和糖脂(glycolipids)等物质的染色，所以也称糖原染色(Glycogen Staining)。过碘酸-雪夫染色是病理学中常规的染色方法之一。

McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h左右。

产品组分： 

使用说明（仅供参考）：

1. 常规固定，常采用10%福尔马林固定液（BL401A），常规脱水包埋。

2. 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液（BL170A）脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。

3. 自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水浸洗2次。

4. 入过碘酸溶液室温放置5～8min，一般不宜超过10min。

5. 自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。

6. 入Schiff Reagent置于室温阴暗处浸染10～20min，自来水冲洗10min。

7. 入苏木素染色液，染细胞核1～2min，酸性乙醇分化液分化2～5s。

8. 自来水冲洗10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。

9. 逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶（BL704A）封固。

阴性对照(可选)：

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。

染色结果：

PAS反应阳性物质(糖原或多糖)：红色或紫红色

细胞核：蓝色

细胞质：深浅不一的红色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气，使用前，最好提前30min取出恢复到在室温，避光暗处使用。

4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5. 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。

6. 该染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，建议采购糖原PAS染色液(细胞专用) (BL1121), 糖原PAS染色液(真菌专用) (BL1122), 因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。

7. 冷冻切片染色时间尽量要短。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

9. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

保存条件：

一年有效。