产品简介:
蛋白预制胶Blue Native PAGE是一种从生物样品(质膜,胞浆等)中分离蛋白质复合物的电泳技术。能分离10kDa-10000kDa范围内的蛋白质以及蛋白质复合物。
蛋白预制胶Blue Native PAGE以考马斯亮蓝G-250代替SDS使蛋白质复合物带负电荷,根据各个不同复合物分子量不同从而在胶中得到分离。这些复合物在胶中以蓝色条带形式呈现。样品制备过程中用一些温和的去污剂如dodecylmaltoside(DM),Triton X-100和毛地黄皂苷(digitonin)等溶解,从而使复合物以近似天然的状态分离。
实验中若想进一步分析复合物各个亚基的成分,通常采用Blue Native PAGE结合SDS-PAGE的方式。
产品特点:
安全便捷—无需配制,即开即用,去掉梳子即可上样
玻璃胶板—有效减少蛋白非特异性吸附,使蛋白条带更为尖锐,清晰
超宽分辨率—有效分离10kDa-10000kDa范围内的蛋白质以及蛋白质复合物
操作便捷—只需用刀片在玻璃胶板一侧轻轻划一下即可
兼容性广—适用Bio-Rad Mini-PROTEAN,Hoefer Mighty Small,六一,天能和君意东方等品牌mini电泳槽
基本信息:
胶板尺寸(宽×高×厚) | 98×84×4.1mm; | 凝胶厚度 | 1.5mm |
凝胶尺寸(宽×高×厚) | 81×74×1.5mm; | 孔数 | 15孔 |
浓缩胶(浓度,高度) | 4%,1.5cm | 最大上样量 | 30μL |
分离胶(浓度) | 4-13% | 电泳缓冲体系 | Tricine-Imidazole |
使用方法(仅供参考):
一、预制胶、电泳液的准备
1、将蛋白预制胶Blue Native PAGE从包装袋中取出,将预制胶固定在电泳槽中,平稳、缓慢地拔出梳子。
2、请按下表配制电泳缓冲液。
组份 | 阴极电泳缓冲液I | 阴极电泳缓冲液II | 阳极电泳缓冲液 |
Tricine (mM) | 50 | 50 | - |
Imidazole (mM) | 7.5 | 7.5 | 25 |
Coomassie Blue G-250 (%) | 0.02 | 0.002 | - |
注意:阴极电泳缓冲液I和阴极电泳缓冲液II呈中性,无需调节pH值;阳极电泳缓冲液需用HCl调节pH至7.0。阴极电泳缓冲液I中的高浓度Coomassie Blue G-250可能会聚集,建议室温保存,并在使用前搅拌混匀。
3、内槽加满阴极电泳缓冲液I,外槽加入阳极电泳缓冲液没过电泳槽底部的阳极即可。
注意:建议用1毫升移液枪吸取阴极电泳缓冲液I轻轻吹打加样孔,将加样孔冲洗干净,去除气泡和残留的缓冲液,这样电泳的效果更佳。
二、电泳
1、将处理好的样品加在上样孔中。最佳上样量须通过实验来确定,样品过量较易导致条带拖尾和信号过强。
2、插好电源,以恒压100V开始电泳,待样品跑过浓缩胶后,电压改为250V,之后可以慢慢增大,并控制电流在50mA以内,直到溴酚蓝条带电泳至凝胶近底部或实验预定的位置。
3、待样品跑到凝胶的1/3处更换阴极电泳液,将阴极电泳缓冲液I更换为阴极电泳缓冲液II,这样可以降低胶的背景。
4、电泳结束后,剥胶,对凝胶进行固定、染色、转膜,该过程和普通的SDS-PAGE相同。如果无需分析复合物各个亚基的组分,可以直接切割感兴趣的目的条带,酶解后进行质谱鉴定。若需分析复合物各个亚基的组成,可进行二向SDS-PAGE。
三、二向SDS-PAGE操作过程
1、制胶:根据实验需求选择合适浓度的SDS-PAGE。
2、平衡:将凝胶根据条带的位置切成长条,置于含有1%SDS,1%巯基乙醇溶液中平衡2h,水洗20min。
3、转移:先煮琼脂糖(0.05g琼脂糖,10mL电泳缓冲液,30μL溴酚蓝),然后将平衡好的胶条摆在二向SDS胶的浓缩胶胶面上,用压胶片把胶条压紧,使二者紧密结合,并保证两个胶面之间没有气泡,再向胶面上封一层琼脂糖。
4、跑胶:等琼脂糖凝固后,将玻璃板摆到电泳槽上,倒入电泳缓冲液,以25mA恒流开始电泳。待样品跑过浓缩胶后,将电流改为45mA直到电泳结束。
5、
货号
BL1438A
规格
10块/盒
品牌
Biosharp
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